豬細小病毒(PPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)

通用名稱：豬細小病毒(PPV)核酸檢測試劑盒(熒光PCR法)

Name ：Porcine Parvovirus Detection Kit （Real-Time PCR Method）

【包裝規(guī)格】50T/盒

【預期用途】

豬細小病毒（Porcine parvovirus, PPV）是引起母豬流產(chǎn)和新生仔豬死亡的主要病原體之一，同時也能引起某些皮膚病和腹瀉[1-2]，嚴重影響豬群的健康和正常生產(chǎn)，己經(jīng)給世界養(yǎng)豬業(yè)造成了很大的經(jīng)濟損失。本病主要表現(xiàn)為流產(chǎn)、產(chǎn)死胎和木乃伊胎，母豬通常不表現(xiàn)臨床癥狀。實時熒光定量 PCR 將常規(guī) PCR 技術(shù)與熒光檢測相結(jié)合,不僅具有敏感性高、特異性強、用時短等優(yōu)點,而且通過分析軟件對數(shù)據(jù)進行分析整理，結(jié)果更為準確直觀, 已成為病原體檢測的重要方法[3]。

本試劑盒適用于檢測腸系膜淋巴結(jié)、肝臟、腎、肺、肝、腦、睪丸、胎盤的肺和淋巴結(jié)、全血等樣本中的豬細小病毒，用于豬細小病毒感染的輔助診斷。

【檢驗原理】

本試劑盒采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術(shù)，設(shè)計一對豬細小病毒特異性引物，結(jié)合一條特異性探針， 用熒光 PCR 技術(shù)對豬細小病毒的 DNA 進行體外擴增檢測，用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

【試劑組成】

說明：不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運輸、反復凍融次數(shù)不超過 5 次，有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

疑似感染仔豬取腸系膜淋巴結(jié)或肝臟；流產(chǎn)或死胎的腎、肺、肝、腦、睪丸和胎盤肺、淋巴結(jié)等組織；待檢   活豬，用注射器取血 5mL

【保存和運輸】

上述標本短期內(nèi)可保存于-20℃，長期保存可置-70℃，但不能超過 6 個月，標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸， 嚴禁反復凍融。

【使用方法】

1.  樣品處理（樣本處理區(qū)）

1.1  樣本前處理

組織樣品：每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g，手術(shù)/剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨，加入1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨，待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；全血樣本：待血凝固后，取血清 100μL 于滅菌離心管中。

1.2  核酸提取

推薦采用公司生產(chǎn)的 DNA/提取試劑盒（離心柱提取法），請按照試劑盒說明書進行操

作。

2.  試劑配制（試劑準備區(qū)）

根據(jù)待檢測樣本總數(shù)，設(shè)所需要的 PCR 反應管管數(shù)為 N（N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照；反應管數(shù)每滿 10 份，多配制 1 份），每測試反應體系配制如下表：

將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中，21uL/管。

3.  加樣（樣本處理區(qū)）

將步驟 1 提取的核酸、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL，分別加入相應的反應管中，蓋好管蓋，混勻，短暫離心。

4.  PCR 擴增（核酸擴增區(qū)）

4.1  將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內(nèi)；

4.2  設(shè)置好通道、樣品信息，反應體系設(shè)置為 25μL；

熒光通道選擇： 檢測通道（Reporter Dye）FAM， 淬滅通道（Quencher Dye）NONE，ABI 系列儀器請勿選擇

ROX 參比熒光，選擇 None 即可。

4.3  推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置：

5.  結(jié)果分析判定

5.1  結(jié)果分析條件設(shè)定

設(shè)置 Baseline 和 Threshold：一般直接按機器自動分析的結(jié)果分析，當曲線出現(xiàn)整體傾斜時，根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值（一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)）、stop 值（一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)），以及 Threshold的 Value 值（上下拖動閾值線至高于陰性對照），重新分析結(jié)果。

5.2  結(jié)果判斷

陽性：檢測通道 Ct 值≤35，且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線；

可疑：檢測通道 35<Ct 值≤38，建議重復檢測，如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38，且曲線有明顯的增長曲線， 判定為陽性，否則為陰性；

陰性：樣本檢測結(jié)果 Ct 值>38 或無 Ct 值。

6.  質(zhì)控標準

陰性質(zhì)控品：Ct>38 或無 Ct 值顯示；

陽性質(zhì)控品：擴增曲線有明顯指數(shù)生長期，且 Ct 值≤32； 以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效。

7.  檢測方法的局限性

1. 樣本檢測結(jié)果與樣本收集、處理、運送以及保存質(zhì)量有關(guān)；

2. 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現(xiàn)假陽性結(jié)果；

3. 陽性對照、擴增產(chǎn)物泄漏，會導致假陽性結(jié)果；

4. 病原體在流行過程中基因突變、重組，會導致假陰性結(jié)果；

5. 不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結(jié)果；

6. 試劑運輸，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準確的結(jié)果；

7. 本檢測結(jié)果僅供參考，如須確診請結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測手段。

【注意事項】

1. 所有操作嚴格按照說明書進行；

2. 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應自然融化，混勻并短暫離心；

3. 反應液應避光保存；

4. 反應中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；

5. 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服；

6. 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行，以免交叉污染；

7. 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器；

8. 試劑盒里所有物品應視為污染物對待，并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通則》進行處理。

【參考文獻】

[1]  Mengeling W L. Prevalence of porcine parvovirus induced reproductive; an abattoir study [J]. Am Vet Med Assoc, 1978, 172: 1291-1294.

[2]  Den S. Parvovirus-like particle associated with diarrhea in unweaned piglets [J]. Can Comp Med, 1985, 49: 343-345. [3]殷 震,  劉景華. 動物病毒學[M] . 2 版.  北京: 科學出版社, 1997.

[4] 國家質(zhì)量監(jiān)督檢驗檢疫總局. SN/T 1919-2016 豬細小病毒病檢疫技術(shù)規(guī)范[S].